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真核转录组测序

简介

真核转录组测序(Eukaryotic Transcriptome Sequencing,RNA-Seq)是利用高通量测序技术对真核生物细胞内的所有转录本(mRNA、lncRNA、circRNA等)进行测序和分析的方法。通过RNA-Seq,可以研究基因表达水平、可变剪接、新转录本发现、融合基因检测以及非编码RNA分析等,广泛应用于生物学研究、医学诊断和药物开发等领域。


 

有参转录组和无参转录组

有参转录组测序(Reference-Based RNA-Seq)是指利用已知的参考基因组进行比对和定量分析,适用于已有高质量基因组的物种。

无参转录组测序(De Novo RNA-Seq)是指在没有参考基因组的情况下,直接对转录本进行测序、组装和注释。适用于缺乏高质量参考基因组的物种。

1 有参转录组和无参转录组的区别


比较项

有参转录组(Reference-Based)

无参转录组(De Novo)

依赖参考基因组

需要

不需要

适用物种

模式生物、已知基因组物种

如人类、小鼠、拟南芥等

非模式生物、新物种

如某些植物、昆虫、海洋生物等

组装难度

较低(直接比对)

较高(依赖测序深度和组装算法)

分析准确性

较高(基于参考基因组)

依赖组装质量

常见分析流程

1. 数据质控(FastQC、Trimmomatic)

2. 比对到参考基因组(Hisat2、STAR、TopHat2)

3. 基因表达定量(HTSeq、featureCounts)

4.差异表达分析(DESeq2、edgeR)

5.功能富集分析(GO、KEGG)

1. 数据质控(去除低质量reads和接头序列)

2. 转录本组装(使用Trinity、SOAPdenovo-Trans等工具)

3. 基因功能注释(比对到Nr、Swiss-Prot、KEGG等数据库)

4. 差异表达分析(基于组装转录本进行定量)

主要应用

基因表达分析、可变剪接研究

新基因发现、物种进化研究


转录组测序的流程

真核转录组测序.png

1. 样品采集(血样,胚胎,动植物组织等):在无RNase环境下完成采集(DEPC水处理耗材,操作台UV灭菌),根据组织特性需要液氮速冻研磨等操作。

2. 总RNA提取:以动物细胞为例,总RNA提取需在无RNase环境下,用TRIzol裂解细胞后经氯仿分层获取水相,异丙醇沉淀RNA并用乙醇洗涤,然后用DEPC水溶解。其质量检测须达到以下标准:

Nanodrop:OD260/280≈2.0(纯净RNA),OD260/230>1.8(无盐污染)

Agilent 2100:RIN≥8(真核样本合格标准)

电泳:28S/18S条带亮度比≈2:1(完整RNA)

3. cDNA建库:用oligo dT磁珠富集带有Poly A尾端的mRNA,将mRNA片段化,反转得到cDNA,链接adapter之后进行扩增。

4. 上机测序:有参转录组常用illumina NovaSeq 6000,无参则可在此基础上与全长测序联合使用以提高组装的准确性,常用PacBio Sequel II/IIe和Oxford Nanopore PromethION。

5. 质控分析达标后,有参转录组可与基因组进行比对,无参转录组则需组装注释。

6. 表达定量分析,更具需求进行差异基因分析、聚类分析和富集分析等。

 

参考文献

[1]崔凯,吴伟伟,刁其玉.转录组测序技术的研究和应用进展[J].生物技术通报,2019,35(07):1-9.

[2]Wang Z, Gerstein M, Snyder M. RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics[J]. Nature reviews genetics, 2009, 10(1): 57-63.

[2]Haas B J, Papanicolaou A, Yassour M, et al. De novo transcript sequence reconstruction from RNA-seq using the Trinity platform for reference generation and analysis[J]. Nature protocols, 2013, 8(8): 1494-1512.


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